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做了无数次免疫荧光,成功率一直很高😇。之前发过文字版本的protocol,以及很多小tips,这次分享一下视频从头到尾的操作叭~ 免疫荧光可以用目的一抗染内源蛋白,也可以转染核酸进入细胞染外源蛋白,根据自己的需求选择用什么方法~ 例如标记线粒体,就需要染内源TOM20或者VDAC等… 如果内源蛋白表达很低很低,则可以外转进去然后标记 免疫荧光比western信号会低很多,一抗二抗使用浓度也会更高(1:200~1:500) 如果做外转标记蛋白,必须要保证转染效率! 提高转染效率的方法: 1、采用适宜的密度:70% 2、转染试剂的选择:lipo2000或lipo3000 3、若是难转染的贴壁细胞,或者悬浮细胞,神经细胞等…建议做稳株后再做免疫荧光,效果会好很多 4、转染前预处理: 采用转染前专用培养基预处理,主包一直在用的是XR西瑞家的,很好用❗️@XR西瑞无限 细胞40%密度时,把培养基弃掉,换成XR转染前专用培养基,培养12~24h,我一般就是培养过夜,这时密度大概70%,刚好做转染。 这个培养基可以增强细胞对核酸的摄入,提高转染效率,做免疫荧光很适合使用了~日常做转染也可以用 细胞状态不会受影响 做免疫荧光不建议采用三无培养基饥饿处理,虽然这种方法也会一定程度上提高转染效率,但是会影响细胞状态,状态差的细胞做出来的结果很可能不尽人意 ps:贴壁细胞转染后24小时,消化细胞重铺于爬片上,消化时一定要注意不要消化过度!此时细胞携带核酸,比WT细胞脆弱一些,XR的消化酶很温和,基本不影响细胞,而且消化很快,大概1min就能消化下来,推荐! #实验室日常 #科研 #科研狗的日常 #研究生 #读博的日子
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大分子and小分子蛋白跑wb的综合优化方案🧫主包做170kd和10kd的蛋白,分享下经验叭~ (图中条带一抗来源均为Abmart) 1、样品制备: 🌟大分子: 用温和裂解液,例如ripa(中)、coip裂解液; 很多大分子是膜蛋白,可做温度梯度进行变性,选择合适温度 我做的大分子变性条件:70度,10分钟 🌟小分子: 可用强裂解液,例如SDS裂解液、ripa(强) 大部分变性条件:100度,5分钟 ➡️裂解液越温和溶解性越差,根据待测靶蛋白选合适的 ➡️保证10ul体系有20~30ug蛋白 2、凝胶体系(图2) 特别大的大分子可选择Tris-Acetate凝胶试剂盒,会比普通的效果好些,200kd左右的用普通配胶试剂即可 大分子:6-7.5%胶 小分子:12-15%胶 3、跑胶(图3图4) 🌟大分子: 把上面条带尽可能跑开,跑胶时间延长,低电压跑(100v),跑胶时间长可在冰水浴中进行,把下面的loading带跑出去,可选择略大分子内参:例如Hsp90,就能一起转膜 🌟小分子: 把下面的条带跑开即可停止,电泳时间缩短,电压可为130v,一般跑到胶的2/3处即可,不要跑到最下面,可选内参:GAPDH,actin等… 4、转膜(图5) 大分子:0.45um pvdf膜 (200kd以内也可用0.22um的,亲测没影响) 小分子:0.22um pvdf膜 转膜条件: 大分子200kd: 恒压90v 或 恒流300mA 2.5h 小分子10~20kd: 恒压90v或 恒流300mA 20~30min,如果有30~50kd的内参一起转,可转45min 采用冰水混合物,湿转法(尤其大分子),效果更好,个人感觉大分子转膜:采用传统转膜液比快转好很多,配方在图7,可用乙醇代替甲醇 比较需要注意的就是这几方面❗️ 从封闭到一二抗孵育没啥差别,一抗的选择也很重要~ Abmart家的一抗是本人一直在用的!好几个指标都用过,效果都挺理想的嘿嘿😈 例如…细胞自噬Parkin,凋亡Bax,bcl2 ,焦亡GSDMD,炎症小体nlrp3等…图6指标为Bax #科研日常#wb实验#WB实验 #研究生#研究生日常
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🧪接上回,WB实验保姆级教程! 小启,今天把WB实验剩下的教程做出来了! 转膜(湿转法) - 切胶激活膜:先把浓缩胶和分离胶多余部分切掉,只留目标分子量区域;PVDF膜用甲醇泡1min,再用转印缓冲液平衡10min ✨ - 转膜三明治:按“负极→海绵垫→滤纸→凝胶→PVDF膜→滤纸→海绵垫→正极”顺序叠,千万别搞反方向 - 缓冲液配方:25mM Tris + 192mM甘氨酸 + 20%甲醇,pH值控制在8.3 ️封闭抗体孵育 封闭:普通蛋白用5%脱脂牛奶(溶于TBST),室温1小时或4℃过夜;测磷酸化蛋白记得换5% BSA(艾碧维),背景立马降下来 📉 一抗孵育:按抗体说明书用稀释液调浓度,4℃孵育过夜或室温90min,摇床慢摇更均匀 洗膜:TBST(含0.1%Tween-20)洗3次,每次5min,把多余抗体洗干净! 二抗孵育:HRP标记二抗(比如艾碧维抗兔IgG-HRP AWA70822)按1:5000稀释,室温孵1小时,之后再用TBST洗3次,每次5min 3ECL检测显影 - 配工作液:A液(发光底物)和B液(增强剂)1:1混合,一定要避光操作哦 ☀️ - 显影步骤:膜的蛋白面朝上,均匀滴ECL液(0.1mL/cm²),反应10-15秒;用滤纸吸掉多余液体,放进化学发光成像仪检测 - 曝光时间:刚开始3-5秒,根据信号强度调整,最长不超过5min 跟着步骤做,WB实验成功率直接拉满~#实验 #科研 #生物实验 #wb #实验科普
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